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Agradecemos a: Americarne; Instituto Plan Agropecuaria;
INTA Balcarse; IICA
Saninet; IVIS; AUIQ; AAMeFe; FEDNA; ITEPA; EXOPOL;
Oncologíaveterinaria.com; Producciónbovina.com; AMMVEPE;
Veterinariosursf; Laboratorios Provet S.A.; por autorizarnos la
reproducción parcial o total de sus artículos publicados en Internet. |
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019.
Comparación del Efecto Terapeútico del Albendazol, Ivermectina y
Nitazoxanida en Infección por Trichinella Spiralis con Diferente
Carga Parasitaria en Fase Intestinal en Modelo Experimental Murino.
M. I. Chávez Ruvalcaba MVZ**.;
J. J. Muñoz Escobedo M en C*.;
M. R. Morales Vallarta Dr. en C**.;
M. A. Moreno García Dra. en C*.;
*Unidad Académica de Biología
Experimental, Universidad Autónoma de Zacatecas, Apartado Postal 12, Guadalupe,
Zacatecas, México. **Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de
Nuevo León, Ciudad Universitaria, a. P. F-16 66450 San Nicolas de los Garza
Nuevo León, México.
RESUMEN
La Trichinellosis
es una enfermedad parasitaria de distribución mundial, y es transmitida al
hombre por el consumo de carne deficientemente cocida, para la cual no existe
tratamiento definitivo. Fue estudiada la eficacia del Albendazol (ABZ), la
Ivermectina (IVM) y la Nitazoxanida (NZX) contra la infeccion causada por
Trichinella spiralis en 40 Ratas Wistar. Todos los animales fueron agrupados,
pesados y sangrados previamente a la infección. Cada animal se infecto con las
larvas infectantes (LI) de Trichinella spiralis: Se formaron 8 grupos de 5
animales cada uno. Tal como se indica a continuación: El grupo No. 1. Infectadas
con 1000 LI, como grupo control. Grupo No.2. Infectadas 500 LI como grupo
control. Grupo No.3. Infectadas con 1000 LI con tratamiento de ABZ. Grupo
No.4. Infectadas con 500 LI con tratamiento de ABZ. Grupo No.5. Infectadas con
1000 LI tratadas con IVM. Grupo No.6. Infectadas con 500 LI tratadas con IVM.
Grupo No.7. Infectadas con 1000 LI tratadas con NZX y grupo No.8. Infectadas con
500 LI tratadas con NZX. El tratamiento con los fármacos se realizo a partir del
día 7 pos- infección.
En base a los
resultados se observó que los animales infectados con 1000 LI y tratados con
ABZ presentaron un 47% de efectividad, los tratados con IVM un 73% de
efectividad y los tratados con NZX un 0% de efectividad en relación a los del
grupo control. Así mismo los infectados con 500 LI y tratados con ABZ
presentaron un 95.29% de efectividad, los tratados con IVM un 76% de
efectividad y los tratados con NZX un 19.28% de efectividad en relación a los
del grupo control. De los resultados obtenidos se concluye que el medicamento
que presentó mayor eficacia ante la infección con 500 LI en ratas, fue el
Albendazol y en la Infección con 1000 LI fue la Ivermectina y el medicamento que
en ambos casos presentó nula o escasa actividad fue la Nitazoxanida
PALABRAS
CLAVE: Albendazol, Ivermectina, Nitazoxanida, Tratamiento, Trichinellosis.
INTRODUCCIÓN
La Trichinellosis
es una enfermedad parasitaria zoonótica que afecta a mamíferos silvestres y
domésticos, en nuestro país (México), se trasmite de modo accidental al hombre
al consumir carne contaminada de cerdo. Las manifestaciones clínicas son
variables, dependiendo de la sensibilidad del individuo, y de la cantidad de
larvas ingeridas.
Debido a la
dificultad y baja incidencia de detección de la enfermedad, el ineficiente
control sanitario en la canal del cerdo contaminado y la práctica frecuente de
matanza clandestina en animales de traspatio, hace necesaria la búsqueda de
fármacos que actúen de manera adecuada en las primeras etapas de la infección,
para así disminuir o erradicar la probabilidad de que se continué reproduciendo
el ciclo vital del parásito
Algunos fármacos
antihelmínticos actúan en formas adultas de nemátodos a nivel
gastrointestinal, Rossignol (1983) muestra en estudios realizados en Europa,
Este de África y Asia, que el ABZ a dosis única de 400 mg presenta un amplio
espectro antihelmíntico en el control de infecciones graves causadas por
nemátodos. Marinculic et al en el 2001, menciona que el tratamiento con
Flubendazol (FBZ) en su ensayo en parásitos adultos en cerdos, fue 100%
efectivo, con dosis de 8 mg/kg y 16 mg/kg por 6 y 14 días después de la
infección por T. spiralis. Chung (2001) afirma que el FBZ es más efectivo que
el Albendazol (ABZ) en la fase adulta de T. spiralis en el ratón a dosis de
20mg/kg /día/5dias con una efectividad de ABZ 46% Y FBZ 99.4%. Por otra parte,
Sebastiao (2001) muestra la eficacia de la Ivermectina (IVM) presentando varios
estudios realizados por otros autores con un 93% de efectividad en escabiosis,
73% en pediculosis, 96% en oncocercosis con tratamiento de 2 meses, y observa
resultados del tratamiento en estrongiloidosis con un 96% de reducción
parasitaria en comparación con el tratamiento de ABZ que presenta un 45% de
efectividad. Sobre la Nitazoxanida (NZX) se han elaborado varias investigaciones
donde se menciona le efectividad de este fármaco, Eguiza S, 2000 menciona una
eficacia global tanto contra helmintos como protozoarios y aun en formas
múltiples o mixtas con un 85 y 97% y justifica su uso por el alto nivel de
eficacia, gran margen de seguridad, amplio espectro, tolerabilidad y aceptación,
facilidad de manejo y bajo costo.
Antecedentes
sobre los fármacos antiparasitarios utilizados: El albendazol es un carbamato
del benzimidazol, es un antihelmíntico de amplio espectro, utilizado a nivel
mundial para la erradicación de las parasitosis (Goodman et al, 2002), Los
benzimidazoles ocasionan muchos cambios bioqímicos en nemátodos sensibles, hay
pruebas de peso que demuestran que la acción primaria entraña la inhibición de
la polimerización de microtúbulos al unirse a la β-tubulina (Lacey et al,
1988, 1990,; Prichard et al, 1998), este bloquea la captación de glucosa de los
parásitos susceptibles en la etapa larvaria y adulta, abatiendo sus reservas de
glucógeno y disminuyendo la formación de trifosfato de adenosina (ATP). Como
resultado el parásito se inmoviliza y muere (Katzung, 2002). Su administración
es por vía oral a dosis aproximada de 400 mg en dosis única en personas desde
los 2 años de edad hasta edad adulta, dependiendo del parásito será la
repetición de la dosis. Es metabolizado rápidamente en el hígado, hasta la forma
de sulfóxido de albendazol (es el que mantiene la actividad antihelmíntica) se
liga aproximadamente en una proporción de 70% a proteínas plasmáticas, su vida
media en el plasma es de 8 a 9 horas (Goodman et al 2002). A diferencia de los
otros benzimidazoles, tiene pocos efectos adversos si se utiliza por poco
tiempo, está contraindicado debido a que es teratógeno y hembriotóxico por tanto
no se recomienda a personas embarazadas, ni a niños menores de 2 años.
Ivermectina es
una lactóna macrocítica semisintética, y se deriva del actinomiceto del suelo
Streptomyces avermitilis inmoviliza a los organismos afectados al inducir
parálisis tónica de sus músculos (Katzung, 2002), la parálisis es mediada por la
potenciación y activación directa de los canales de Cl- sensibles a ivermectina,
controlados por el glutamato. Esos canales están solamente presentes en nervios
y células musculares de los invertebrados y una vez potencializados ocasionan un
aumento de permeabilidad en la membrana a los iones de cloro, con
hiperpolarización de los nervios y las células musculares, resultando la
parálisis y muerte del parásito, como lo demostraban Arena et al 1995. y Cully
et al 1994. Los canales de Cl- controlados por el glutamato probablemente sirven
como dos lugares de acción de la ivermectina también en insectos y crustáceos,
es metabolizada ampliamente, la dosis recomendada es de 200
mg/kg en
dosis única y presenta una vida media de 27 horas, se une el 93% a proteínas
plasmáticas, se refiere una depuración sistémica lenta (cerca de 1.2 litros/por
hora) en un volumen aparente de distribución de aproximadamente 47 litros. Se
excreta poco por el riñón y su mayor excreción es por heces, pasa a la leche
materna carece de efectos farmacológicos o tóxicos conocidos en el ser humano;
ello se debe en parte al echo de que la ivermectina no cruza la barrera
hematoencefalica. Se recomienda para el control colectivo y terapéutica de
diversos parásitos como cestodos, trematodos, helmintos y protozoarios (
Sebastiáo, 2001, The Merk I, 1996). Debe ser administrada con cautela en
pacientes que usan drogas que deprimen el Sistema Nervioso Central (Sebastiáo.
2001).
Rossignol
(Investigador americano de origen francés) realizó una modificación en el anillo
de los metronidazoles, y básicamente ello originó la molécula de la Nitazoxanida,
el cambio se realizó en la estructura básica al sustituir el nitrogeno por el
azufre (Eguiza, 1998). Este fármaco fue autorizado para su salida al mercado
nacional por la Dirección General de Insumos para la Salud, dependiente de la
Secretaria de Salud en 1996.
Nitazoxanida
presenta un solo metabolito, su vida media es corta de una hora, se puede
administrar cada 12 horas, se elimina por las heces y su mecanismo de acción es
el siguente:
1º Bloquea el
ciclo aerobio de la glucosa, de tal manera que los productos del metabolismo de
la glucosa no terminan en agua y CO2, sino que termina por medios anaerobios,
por lo que el resultado es ácido láctico crea un ambiente hostil para los
microorganismos, que prácticamente los destruye.
2º En
Protozoarios la reducción que se hace al sustituir el nitrógeno por el azufre
permite que la nitazoxanida, básicamente su metabolito, penetre en el DNA del
parásito, lo que hace que se rompa, que se fragmente la estructura del material
nucleico y con ello se inhiba la síntesis del ácido nucleico. Tiene utilidad
contra nematodos, céstodos y tremátodos (Eguiza, 1998).
Como efectos
adversos presenta nauseas, vomitos, dolor abdominal, diarrea y se recomienda
7.5mg/kg/dosis, es decir, la dosis diaria es de 15 mg/kg, dividida dos veces al
día. La administración habitual es de tres días (Eguiza, 2000).
MATERIAL Y METODO
Se utilizaron 40
Ratas Hembras de la cepa Wistar con un peso de 250 gr
±10 gr de
2 meses de edad, divididos en 8 grupos de 5 animales cada uno, todas fueron
sangradas para tomar muestras control, se procedio a administrar Larvas
Infectantes de Trichinella spiralis; los grupos 1, 3, 5 y 7 fueron infectadas
con 1000 LI, y los grupos 2, 4, 6, y 8 con 500 LI. De las ratas previstas se
excluyeron algunas del estudio por causas que estuvieron fuera de nuestro
control, como embarazos y muertes por hipersensibilidad o sobredosis al
anestesico antes de infectarlos (en el grupo 2 y 6 para infección con 500 LI),
como se muestra en el cuadro No. 1. Se formaron 8 grupos de 5 animales cada uno:
El grupo No.1. Infectadas con 1000 LI como grupo control. Grupo No.2.
Infectadas 500 LI como grupo control. El Grupo No.3. Infectadas con 1000 LI con
tratamiento de ABZ. Grupo No.4. Infectadas con 500 LI con tratamiento de ABZ.
Grupo No.5. Infectadas con 1000 LI tratadas con IVM. Grupo No.6. Infectadas con
500 LI tratadas con IVM. Grupo No. 7. Infectadas con 1000 LI tratadas con NZX y
Grupo No.8. Infectadas con 500 LI tratadas con NZX.
La administración
oral del Albendazol (Sector Salud) fué de 15mg/kg de peso/al día por tres días
consecutivos, la administración de Ivermectina (Iverful ® Aranda) fue de 200
mg/kg
dosis única y la de Nitazoxanida (Daxon ® Columbia) 7.5 mg /kg/c/12 hrs. Por 3
días. Apartir del dia 7 pos- infección. Se llevo acabo un seguimiento de la
respuesta inmune sangrándolos 4 ocasiones (preinfección, pos-infección,
postratamiento, pre-sacrificio), se obtuvo suero para determinación inmunológica
por las técnicas de Inmunodifusiòn doble e Inmunoelectrotransferencia, los
animales se sacrificaron a los 60 días pos-infección se les realizaron las
técnicas directas de compresión, digestión artificial y tinción de
Hematoxilina-eosina (H/E).
SANGRADO DE LOS ANIMALES
Los animales
fueron sangrados antes de infectarlos, posterior a la infección, después de la
aplicación del tratamiento con fármacos y antes del sacrificio, previamente
fueron anestesiados con vapores de halotano y se obtuvieron muestras de sangre y
se separo el suero para la realización de Inmunodifusiòn doble e
Inmunoelectrotransferencia.
INFECCIÓN, TRATAMIENTO Y SACRIFICIO DE LOS ANIMALES
Los animales
fueron puestos a dieta sólida 24 hrs antes de la infección. Se formaron 8 grupos
de 5 animales cada uno, se les administro el paquete de carne infectada con 500
LI y 1000 LI individualmente, el grupo No. 1. Infectadas con 1000 Larvas
infectantes (LI) como grupo control. Grupo No. 2. Infectadas 500 LI como grupo
control. Grupo No. 3. Infectadas con 1000 LI con tratamiento de ABZ. Grupo No.
4. Infectadas con 500 LI con tratamiento de ABZ. Grupo No. 5. Infectadas con
1000 LI tratadas con IVM. Grupo No. 6. Infectadas con 500 LI tratadas con IVM.
Grupo No. 7. Infectadas con 1000 LI tratadas con NZX y Grupo No. 8. Infectadas
con 500 LI tratadas con NZX.
La administración
oral del Albendazol (Sector Salud) fué de 15mg/kg de peso/al día por tres días
consecutivos, la administración de Ivermectina (Iverful ® Aranda) fue de 200
mg/kg
dosis única y la de Nitazoxanida (Daxon ® Columbia) 7.5 mg /kg/c/12 hrs. Por 3
días. A partir del día 7 pos- infección. Para el sacrificio de los animales se
introdujeron en una cámara de halotan, a la muerte se despielaron, evisceraron y
se realizaron cortes de músculos para técnica de compresión, fijación de formol
y técnica de digestión artificial.
TÉCNICA DE COMPRESIÓN EN PLACA.
Para la técnica
de compresión en placa se utilizo aproximadamente 50mg de cada tejido
(masetero, lengua, intercostales, diafragma, pierna, cerebro y cola) cada
muestra se colocó entre 2 laminillas y se comprimieron, ocupando una área de 1
X 5 mm, se observó al microscopio óptico, con el lente 10X, y se realizó el
conteo de 10 campos, por triplicado (Del Río et al. 1986 y Fragoso, 1981).
TÉCNICA DE DIGESTIÓN ARTIFICIAL.
Se utilizaron
muestras de 30 g de tejido (masetero, lengua, intercostales, diafragma, pierna)
y se incubaron a 37°C, en un tamiz de tul en forma de saco, suspendido en una
solución al 0.3 % de pepsina (10,000 U) y HCl al 37 % (0.2M) en 500 ml de agua
destilada, dentro de un embudo de separación; trascurridas 24 horas se procedió
a separar el paquete larvario con las LI, que se depositaron en el fondo del
embudo, se observaron en una cámara de newbawer al microscopio óptico con lente
10X (Del Río et al. 1986) cuantificando el paquete.
OBTENCIÓN DEL ANTÍGENO SOLUBLE TOTAL DE Trichinella spiralis..
Para la obtención
del antígeno se sacrificaron 4 ratas de las cuales se incubó a 37º C por 24
horas según el método descrito por Del Río y col en 1986, en donde se colocó
(aproximadamente) 60gr de tejido en un tamiz de tul, en forma de saco; en
suspensión de una solución al 0.03 % de pepsina (10,000 U) y HCl al 37 %
(0.2M) en un litro de agua destilada en un embudo de separación; después de 24
horas se procedió a separar las LI que se depositaron en el fondo del embudo,
las cuales, después de varios lavados con solución básica de fosfatos (PBS), se
desengrasaron con acetona absoluta a evaporación y se mantuvieron en PBS, luego
se sonicò con la finalidad de romper cutícula y vaciar el contenido antigénico
de las LI, se centrifugó a 3500 rpm por 1.5 horas, el sobre-nadante es el
antígeno soluble total (AST) mismo que se usó como antígeno para las diferentes
pruebas en el modelo experimental con los sueros problema.
Para determinar
que el antígeno tuviera la concentración de proteínas adecuada se obtuvo una
curva estándar usando Albúmina Sérica Bovina, según la metodología de
Bradford H. y col. 1986, ajustando la concentración de proteínas obtenidas a
una densidad óptica de 610 nm mediante azul de Coomassie al 0 .06 % preparado en
HCl al 2.2 %. Se interpolo el valor de la densidad óptica del antígeno, a la de
la curva estándar de albúmina, se obtuvo la concentración de proteínas
contenidas en los dos tipos de antígeno.
Se realizo
determinación de proteínas por el método de Bradford H et al 1986, Para fijación
del antígeno se realizo el corrimiento electroforético en genes de
poliacrilamida (Laemmil 1970). El corrimiento se realizó en una cámara de
Protean II xi Cell (Bio- Rad), por espacio de dos horas, usando 100 miliamperes
por gel. Se continuó con la tinción de uno de los geles con el colorante azul
de Coomassie G- 250 y su secado en membranas de celofán.
Se usaron los
siguientes marcadores de pesos moleculares: Fosforilasa (97 kDa), Albúmina
sérica bovina (68 kDa), Ovo albúmina (43 kDa), Anhidrasa carbónica (24 kDa) y
Lisosima (14 kDa); el gel restante se usó para trasferencia a papel de
nitrocelulosa (NC). Así mismo se realizó la técnica de inmunodifusión doble
referida por Ouchterlony en 1958 y la técnica de inmunoelectrotransferencia (IET)
de acuerdo a lo descrito por (Towbin et al 1979), se realizo la técnica de
Hematoxilina-Eosina, el tejido se conserva en formol al 10% para cortes
histológicos, con el fin de determinar las características de la célula nodriza
y tejidos circundantes (Manual of Histology 1957).
Como ya
mencionamos se realizaron 5 técnicas para la obtención de resultados, 3
directas (Conteo de larvas enquistadas en músculo en 10 campos en tres cortes,
Técnica de fecundación y Digestión artificial (Foto 3) y 2 indirectas para
detectar respuesta antigénica a los componentes del parásito (Inmunoelectrotransferencia
y Microinmunodifusion doble) Cuadro No. 2.
Para el análisis
estadístico se estableció un experimento bajo un diseño de tratamientos
factorial y un diseño completamente al azar, los factores bajo estudio fueron A:
Técnica que tuvo 2 niveles: 1).- conteo de larvas en cortes de músculo y 2).-
conteo de larvas en digestión artificial y el factor B: infección con 8 niveles
a).- control con 1000 LI, b).-control con 500 LI, c).-ABZ con 1000 LI, d).-ABZ
con 500 LI, e).-IVM con 1000 LI, f).-IVM con 500 LI, g).-NZX con 1000 LI, y h).-NZX
con 500 LI, resultando 14 tratamientos a ensayar. El modelo lineal asociado al
diseño de tratamientos expuesto fue de la siguiente forma: Yijk = M+Ai+Bj+AiBj+Sijk
RESULTADOS
Las larvas
obtenidas en este trabajo para la infección de los animales fueron viables por
sus características fenotípicas obteniendo 90 LI en 0.008gr de carne para la
realización de los paquetes infectantes.
El cuadro clínico
de los animales infectados por T. spiralis se manifestó con diarrea
característica de la respuesta celular a la infección, a partir del 3er día de
la infección, pelo hirsuto, disminución de la movilidad, ligero encorvamiento y
signos y síntomas descritos por otros autores (Rida et al 1981; Cabral et al.
1988; Arnol et al 2001) como mialgia, fiebre, debilidad, edema facial, dolor de
cabeza, fatiga, artralgia, calosfríos, astenia, adinamia, dolor en abdomen y
coyunturas, pérdida de peso etc.., en animales que recibieron tratamiento cedió
la diarrea y algunos de los signos al segundo día de iniciado este. Al
sacrificio de los animales observamos el complejo célula nodrizas- parásito
formadas tanto en animales infectados como en los tratados aunque en menor
número.
En el suero de
las ratas infectadas por medio de la inmunodifusion doble encontramos la
presencia de la banda que nos indica la reacción Ag-Ac, la verificación de la
infección la realizamos por medio de la electroforesis.
La electroforesis
nos reveló la presencia de una serie de bandas, que están comprendidas en un
rango de 97 a 24 kDa, donde se pudo observar la presencia del triplete
inmunodominante característico de T. spiralis que oscila entre 42, 45 (Moreno et
al. 1996,2001) y 48 kDa siendo el más marcado el de 43 kDa.
La concentración
proteica, y el patrón antigénico, fue similar tanto en el antígeno extraído por
sonicación, como el obtenido por nitrógeno líquido.
El antígeno
soluble total tubo una concentración proteica de 2.7mg/ml.
Como ya se mencionó los animales infectados con 1000 LI tratados con ABZ
presentaron un 47% de efectividad, los tratados com IVM un 73% de efectividad y
los tratados con NZX un 0% de efectividad en relación a los del grupo control.
Asi mismo los infectados con 500 LI y tratados con Abz presentaron un 95.29% de
efectividad, los tratados con IVM un 76% de efectividad y los tratados con NZX
un 19.28% de efectividad en relación a los del grupo control.
A la técnica de
H/E el patrón característico del implante de T. spiralis en músculo estriado
(foto No. 4.)
En las 4 graficas
mostramos los resultados de análisis de varianza realizado a los resultados que
se presentan en el cuadro No. 2. Del mismo modo se observa que la interacción
entre factores resultó significativa como se observa en la curva superior de la
grafica No. 2. Sin embargo se observa también que el tratamiento control
alcanzó en la técnica de digestión la expresión mas alta en él número de larvas,
con relación a la técnica 1 (compresión) en la cual no se observan diferencias
entre medicamentos (grafica No.1.), los ocho puntos expresan cantidades de
larvas sin cambios significativos como se muestra en la línea inferior de la
misma grafica. En la grafica No. 3 se observan las larvas en Digestión
artificial, llama la atención como resalta el tratamiento 4 (infectados con
500 LI y tratados con ABZ) es el que presenta menor número de larvas infectantes,
seguido por el tratamiento 6 (infectados con 1000 LI y tratados con IVM). En la
grafica No. 4.Se observa que los tratamientos 3, 4, y 5 muestran un menor y por
tanto mejor intervalo de confianza. En la actividad del tratamiento existe una
diferencia estadísticamente significativa se muestra por el análisis de ANOVA
con un P value de <0.001.
DISCUSIÓN
La trichinellosis
es una zoonosis no controlada en su totalidad, por lo tanto es de vital
importancia el estudio de tratamientos adecuados en las diferentes etapas de la
enfermedad, actualmente existen muy pocos fármacos eficaces en el tratamiento en
su etapa digestiva (Casali, 1977; Yépez, 1991), el aumento en la incidencia ha
preocupado a clínicos e investigadores lo que los ha llevado a la búsqueda de
tratamientos específicos ( Casalí, 1977; Fragoso, 1983; Yépez, 1999; Eguiza,
2000; Marinculic, 2001 y Chung, 2001).
La magnitud del
problema es de gran importancia ya que en múltiples ocasiones pasa
desapercibida, principalmente en etapas digestivas, cuando es confundida con una
infección gastrointestinal de tipo bacteriano (Arnol, 2001).
Las ratas
utilizadas en nuestro estudio presentaron signos característicos atribuibles a
la enfermedad como son pelo hirsuto, dificultad y disminución de la movilidad,
diarrea que puede ser característica de la respuesta celular a la infección,
posiblemente controlada por la respuesta inmune en el huésped como lo describe
Krco en 1983. Los resultados concuerdan con otros autores (Rossignol, 1983) las
ratas infectadas con 500 LI y tratadas con ABZ presentaron una disminución en LI
de 95.3%, las tratadas con IVM un 77% y las tratadas con NZX un 20%
respectivamente en relación al grupo control. Los resultados con ABZ parecen más
efectivos probablemente se deba a que la carga parasitaria que estamos
utilizando es mas baja por tanto el fármaco alcanza mas sitios receptores en el
parásito adulto, afectándolo y de cierto modo ayuda la respuesta inmune del
individuo.
La IVM es otro
antiparasitario que ha venido a revolucionar la terapéutica de las parasitosis
debido a su fácil administración, , amplio espectro, su bajo costo, tolerancia y
baja toxicidad a dosis única de 200
mg/kg de
peso corporal recomendado por la Code of Federal Regulations en 1996 (CFR). En
nuestro estudio resultó ser más uniforme o equivalente el resultado ya que con
ambas cargas (500 LI y 1000 LI) presentó actividad similar en promedio de 75 ±
2%. Es necesario complementar el estudio para demostrar la potencialización o
sinergismo del tratamiento con ABZ+IVM.
No así el
resultado del tratamiento con Nitazoxanida ya que en la infección con 1000 LI
no presentó efecto alguno y en la infección con 500 LI presentó solo un 20% de
efectividad que es inconveniente para el tratamiento de esta parasitosis en
ratas.
Con este estudio
concluimos que el medicamento que presento mayor eficacia ante la infección con
500 LI en ratas fue el Albendazol y en la Infección con 1000 LI fue la
Ivermectina y el medicamento que en ambos casos presentó escasa actividad fue
la Nitazoxanida.
Cuadro No. 1 .-
RESUMEN METODOLÒGICO USADO EN EL MODELO EXPERIMENTAL EN RATAS WISTAR
|
Modelo
experimental |
Número de
ratas |
Edad meses |
Sexo |
Grupos de
Infección (LI) |
Sangrado
Pre-infección Pre-tratamiento Pos-tratamiento Pre-sacrificio |
Tratamiento |
|
Grupo 1 |
5 |
2 |
Hembras |
1000 |
SI |
Control |
|
Grupo 2 |
3 |
500 |
|
Grupo 3 |
5 |
1000 |
Albendazol
3 dosis |
|
Grupo 4 |
5 |
500 |
|
Grupo 5 |
5 |
1000 |
Ivermectina
1 dosis |
|
Grupo 6 |
3 |
500 |
|
Grupo 7 |
5 |
1000 |
Nitazoxanida
6 dosis |
|
Grupo 8 |
5 |
500 |
Cuadro No. 2
–PROMEDIOS DE LOS RESULTADOS DE LAS DIFERENTES TÉCNICAS DE DIAGNOSTICO.
|
Método |
Control |
Tx
Albendazol |
Tx
ivermectina |
Tx
nitazoxanida |
|
1000 |
500 |
1000 |
500 |
1000 |
500 |
1000 |
500 |
|
Conteo de
larvas en cortes |
3.21 |
2.20 |
0.76 |
0.32 |
0.70 |
0.23 |
0.82 |
0.31 |
|
Conteo de
larvas en Digestión artificial |
750 |
542 |
395 |
25.5 |
198.5 |
127.5 |
750 |
437.5 |
|
Técnica de
fecundación |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
|
Inmunoelectrotransferencia |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
|
Inmunodifusión doble |
+ |
+ |
+ |
- |
+ |
- |
+ |
+ |
Tx = tratamiento,
(-) =
negativo, (+)
= positivo.

Grafica No. 1.-
Nos muestra la sensibilidad, el técnica 1 (conteo de larvas en músculo) no es
sensible a la carga parasitaria mientras que la técnica 2 (conteo en digestión
artificial) muestra una respuesta estadisticamente significativa entre los 2
niveles de infección ( 500 LI y 1000LI).

Grafica No. 2.-
muestra que la técnica conteo de larvas en corte es independiente del tipo de
tratamiento, es decir no es sensible a la lectura, se observó ligeramente
superior a la del control. La técnica de conteo de larvas en Digestión
Artificial si es sensible a los tratamientos y miestra un control de lectura
alto a los tratamientos.
Grafican No. 3.-
En este histograma, donde solo se observan las larvas en Digestión artificial,
llama la atención como los tratamientos 1 ( control con 1000 LI) y 7 (infección
con 1000 LI y tratadas con Nitazoxanida) muestran similitud en la respuesta, y
resalta el tratamiento 4 (infectados con 500 LI y tratados con Albendazol)es
el que presenta menor número de larvas infectantes, seguido por el tratamiento
6 (infectados con 1000 LI y tratados con Ivermectina).

Grafica No. 4.-
Aquí se presenta el intervalo de confianza de los resultados y se observa como
3, 4, y 5 son los que presentan mas corto y mejor intervalo.
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