Volver
Lavado Uterino Como Tratamiento Alternativo de Infertilidad
Infecciosa en Yeguas Problema.
Afredo Parraguirre,
MVZ
El presente trabajo se realizo con el objeto de
determinar si el uso de lavados uterinos es útil para resolver problemas de
infertilidad infecciosa en yeguas dedicadas a la reproducción.
A las yeguas en estudio se realizó examen físico
general (evaluación perineal, aplomos y constantes fisiológicas) se realizó
evaluación de los genitales internos por medio de especulo vaginal, palpación
transrectal y ultrasonido, se obtuvieron muestras endometriales por medio de
hisopado exfoliativo para cultivo bacteriológico general y susceptibilidad, se
elaboraron frotis para citología endometrial por medio de la tinción de
papanicolaou
Los microorganismos causantes de la infección
uterina encontrados por medio del cultivo bacteriológico general fueron:
Klepsiella oxitoca, Escherichia coli, Actinomyces pyogenes, Corynebacterium
pseudotuberculosis, Proteus mirabilis, Klepsiella pneumoniae, Pseudomona
aeuroginasa y Staphylococcus aureus. En la citología por exfoliación
endometrial se encontró neutrofilos en los frotis de las yeguas problema, y en
algunas de las yeguas testigo.
Se realizó el recelado diario con un garañón a las
yeguas con infertilidad infecciosa y yeguas testigo, se realizaron lavados
uterinos con solución salina fisiológica, lavado con solución salina
fisiológica e infusión de gentamicina y lavado con solución salina fisiológica
e infusión de sulfanilamida respectivamente y se reevalúo el aparato
reproductor para dar servicio, sea por monta natural y/o inseminación
artificial con semen fresco, se realizó examen de gestación a los dieciséis
días.
Introducción:
El estudio y tratamiento de los casos de
infertilidad en cualquier especie, requieren de habilidad y conocimiento para
correlacionar las funciones endócrinas con los hallazgos clínicos. La
evaluación de la fertilidad en la yegua se basa en los hallazgos clínicos
obtenidos para determinar el estado reproductivo de la misma, lo que ayuda a
la selección de un manejo óptimo y de los procedimientos terapéuticos a
seguir.
Existen numerosos factores que pueden afectar la
fertilidad, se dice que los problemas más frecuentes que causan infertilidad
infecciosa son: partos distócicos, mala conformación perineal, manipulación
excesiva en el monitoreo de los eventos del estro, alojamientos deficientes y
la falta de aseo del aparato reproductor de la hembra o del macho al momento
de la copula.
Al enfocarnos a los problemas de infertilidad en
yeguas se ha encontrado que existen enfermedades hormonales, neoplásicas e
infecciosas, siendo la infertilidad el problema que más perdidas económicas
genera en haras dedicadas a la reproducción.
El tiempo de gestación de la yegua (325 días +/-
15 días) es determinante en la industria equina, pues cuando se invierte en
alimentación y manejo de hembras y de sementales durante un año y no se
produce un potro en el transcurso del mismo, la relación costo-beneficio se ve
afectada de manera drástica generándose egresos sin obtener ingresos por la
venta de un potro producido en ese año siempre que la explotación se dedique a
la producción de potros. En otras circunstancias, yeguas con una trayectoria
deportiva destacada no son dedicadas a la reproducción en sus mejores años y
se pretende dedicarlas a la gestación en edades avanzadas, cuando su
conformación perineal induce a infecciones uterinas, que darán como resultado
infertilidad infecciosa.
La relación entre la infertilidad de la yegua y la
infección bacteriana de su aparato reproductor ha sido tema de estudio de
diversos autores muchos de estos estudios muestran que varias especies de
bacterias (Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Flavobacterium spp,
Corynebacterium haemolyticum, Pseudomona fluorescens, Bacillus spp,
Micrococcus spp, Streptococcus spp) pueden estar presentes en las diferentes
partes internas del aparato reproductor de la hembra como flora normal, lo
cual indica que no toda la flora bacteriana existente en el aparato
reproductor es patógena
El uso de lavados para el tratamiento de
infecciones uterinas es común en la especie bovina; sin embargo en la especie
equina no se ha establecido este tipo de terapia debido a la sensibilidad que
presenta el endometrio equino al contacto con los quimioterapeuticos
utilizados para tal fin y al riesgo que se puede presentar en el manejo, tanto
para el Médico como para la yegua.
Los problemas de infertilidad son bajos en hatos
pequeños en los que se puede llevar un estricto control y selección de yeguas
y sementales, en contraste, este tipo de problemas aumentan en poblaciones
grandes
Los casos de infertilidad infecciosa se
manifiestan principalmente en yeguas con mala conformación vulvar, yeguas
seniles y yeguas con múltiples partos.
Ciclo estral de la yegua.
El conocimiento adecuado del ciclo estral nos
permite evaluar de manera correcta los eventos que ocurren durante el mismo,
de esta manera se puede obtener un diagnostico acertado para brindar un mejor
tratamiento a las yeguas con infertilidad infecciosa.
El ciclo estral se define como el periodo entre
dos ovulaciones acompañado por signos de estro, o entre dos ovulaciones que
ocurren cuando las concentraciones de progesterona son básales (menores a 1 ng/ml).
Algunas yeguas tienen la tendencia de presentar
estros anovulatorios durante la época de anestro, y otras yeguas ovulan
durante la fase lutea del ciclo, cuando las concentraciones de progesterona
son elevadas.
La duración promedio del ciclo estral de las
yeguas es de veintiún días, aunque se consideran ciclos estrales normales de
diecinueve a veintitrés días. El ciclo se puede dividir en dos etapas, la de
receptividad sexual denominada estro y que dura entre cinco y siete días; la
etapa de diestro o fase lutea que tiene una duración promedio de catorce a
quince días, durante la cual la yegua no acepta al garañon debido a que tiene
un cuerpo luteo productor de progesterona.
Al intervalo entre la regresión del cuerpo luteo y
la siguiente ovulación se le llama fase folicular (estro). La duración de esta
fase depende del grado de desarrollo que tiene el folículo ovárico al inicio
de la regresión del cuerpo luteo, de la velocidad del crecimiento folicular a
partir de ese momento y del tamaño requerido por el folículo para ovular.
Dichos eventos se ven afectados principalmente por
la época del año por lo que la duración de la fase folicular tiende a ser mas
larga al inicio de la época reproductiva que a la mitad de la misma. La
duración de la fase folicular también se ve afectada por variaciones
individuales y de raza. El diámetro del folículo más grande influye en la
luteolisis, en el inicio del siguiente estro, en la ovulación y en la duración
del diestro. Mientras más grande sea el tamaño folicular al inicio del estro,
este folículo llegara a ovular más rápido y por lo tanto será más corto el
estro.
ESTRO: Es el periodo durante el cual la yegua es
sexualmente receptiva al garañon y el aparato reproductor está preparado para
la recepción y transporte de los espermatozoides, ocurriendo finalmente la
ovulación.
Durante el estro el folículo dominante secreta
grandes cantidades de estrógeno, lo que induce a la receptividad sexual.
Además los estrógenos provocan cambios en las características del útero, los
pliegues uterinos se hacen más prominentes y el útero a la palpación se
encuentra flácido y edematoso,
Conforme avanza el estro la mucosa vaginal se ve
mas hiperemica, observándose de color rosa intenso a la vaginoscopia, se
presenta edema en cervix y las secreciones aumentan en cantidad y
consistencia. La ovulación ocurre aproximadamente veinticuatro a cuarenta y
ocho horas antes de que finalice el estro.
DIESTRO: Es el periodo durante el cual la hembra
no es receptiva al garañon y el aparato reproductor se prepara para recibir y
mantener la gestación. Después de la ovulación la cavidad folicular comienza a
llenarse de sangre, formando un cuerpo hemorrágico, el cual es fácilmente
palpable doce horas después de la ovulación.
El cuerpo luteo es una glándula temporal promotora
de progesterona que se mantendrá funcionando durante catorce a quince días
hasta su luteolisis.
OBJETIVOS E HIPOTESIS
Objetivo General: Obtener mejores tasas de
fertilidad mediante el uso de lavados uterinos para combatir problemas de
infertilidad infecciosa en yeguas dedicadas la reproducción.
Objetivo Particular: Contar con una terapia
alternativa intrauterina para el tratamiento de la infertilidad infecciosa en
yeguas problema y aumentar el número de yeguas gestantes en explotaciones de
reproducción equina.
Hipótesis: Los lavados uterinos son útiles para
resolver problemas de infertilidad infecciosa en yeguas y mejorar los
porcentajes de fertilidad
Material y Métodos:
-
Siete yeguas problema con infección uterina y
siete yeguas testigo clínicamente sanas (de un hato de sesenta y dos yeguas
reproductoras)
-
Un garañón para recelado.
-
Hisópos para exfoliación endometrial en la toma
de muestra para examen bacteriológico general y susceptibilidad.
-
Catorce medios de transporte Stuart para examen
bacteriológico general y susceptibilidad.
-
Hielera y refrigerantes para transporte de
muestras.
-
Hisopos para exfoliación endometrial en la
elaboración de frotis para citología endometrial.
-
Porta objetos y cubreobjetos para citología
endometrial.
-
Hematoxilina de Harris, colorante OG6, colorante
EA 50, etanol (50, 70, 80 y 96%), xilol y agua corriente para tinción de
papanicolaou en frotis endometrial.
-
Un microscopio electrónico con objetivo 40X.
-
Siete catéter Foley para infusión intrauterina.
-
Solución salina fisiológica para infusiones
intrauterinas.
-
Gentamicina.
-
Sulfanilamida.
-
PGF2a.
-
Especulo vaginal para equinos.
-
Un ultrasonido portátil con transductor lineal
de cinco MHz.
-
Gel lubricante vaginal.
-
Guantes de cirujano (latex).
-
Guantes para inseminación.
-
Vendas elásticas.
-
Jabón neutro.
-
Una vagina artificial.
-
Diluyente para semen.
-
Pipetas para inseminación artificial de equinos.
-
Gel lubricante no espermicida.
-
Se sincronizaron todas las yeguas en estudio con
PGF2a 5 mg/dosis total
Se realizó examen físico general de las yeguas
testigo y yeguas problema y se evaluaron las condiciones generales del aparato
reproductor mediante palpación transrectal, vaginoscopio y ultrasonido.
Se realizó examen bacteriológico general a las
yeguas testigo y yeguas problema, con la finalidad de saber que bacterias se
encuentran en el útero, las muestras se obtuvieron por medio de hisopado
exfoliativo del endometrio en la etapa de estro, y se trasladaron al
laboratorio en hielera y refrigerantes en medio de transporte stuart.
Se elaboraron frotis para citología endometrial en
las yeguas testigo y yeguas problema, las muestras se obtuvieron por medio de
hisopado exfoliativo del endometrio y se realizo tinción con la técnica de
papanicolaou.
Se determinó la etapa del ciclo estral de todas
las yeguas en estudio por medio de recelado diario, palpación transrectal y
ultrasonido.
Se realizaron lavados uterinos a las yeguas
problema bajo el siguiente orden: lavado con solución salina fisiológica,
lavado con solución salina fisiológica e infusión de gentamicina, lavado con
solución salina fisiológica e infusión de sulfanilamida.
Se evaluaron los resultados de los lavados
uterinos por ultrasonido.
Se dio monta natural o se inseminó con semen
fresco según requerimiento de cada caso
Se hizo examen de gestación por ultrasonido a los
dieciséis días a las yeguas servidas
Resultados:
Los lavados uterinos que se realizaron con
solución salina fisiológica ofrecieron resultados terapéuticos poco
satisfactorios pero ayudaron a evacuar el contenido séptico del útero, se
gestó solo una yegua problema mediante este tipo de lavado.
Los lavados con gentamicina fueron eficaces, se
gestó una yegua problema mediante este lavado pero la desventaja que se
encontró fue el exceso de irritación para el endometrio.
Los lavados con sulfanilamida brindaron mejor
resultado para resolver los casos de infertilidad infecciosa, ya que se
lograron gestar tres de las siete yeguas problema, no causa irritación
endometrial y por ser un antibiótico de amplio espectro actúa de manera eficaz
como bactericida.
De las yeguas testigo cuatro presentaron resultado
positivo al diagnostico de gestación a los dieciséis días después de ser
servidas las siete yeguas en el ciclo numero dos. A las tres restantes se les
dio servicio en ciclo numero tres, se diagnosticaron a los dieciséis días y se
obtuvieron resultados positivos en dos yeguas. En el ciclo número cuatro se le
dio servicio a la yegua que no quedo gestante en los dos ciclos anteriores y
se le hizo diagnóstico de gestación por ultrasonido a los dieciséis días
obteniéndose resultado positivo.
Las yeguas problema ofrecieron resultados
satisfactorios al ser gestadas cinco de siete yeguas problema después de
recibir tratamiento quimioterapéutico intrauterino.
Discusión:
En el presente estudio los microorganismos
encontrados en el cultivo bacteriológico general de las yeguas problema
fueron: Klepsiella oxitoca, Escherichia coli, Actinomyces pyogenes,
Corynebacterium pseudotuberculosis, Proteus mirabilis, Klepsiella pneumoniae,
Pseudomona aeuroginasa y Staphylococcus aureus. y de las yeguas testigo
fueron: Klepsiella pneumoniae, Staphilococcus albus, Corynebacterium,
Streptococcus fecales, Staphilococcus aureus, Escherichia coli, y Taylorella
equigenitalis coincidiendo con los mencionados por Bribiesca, Elliot, Mc
Kinnon y Scout. Quienes afirman que estos microorganismos son flora normal del
aparato reproductor equino y que se tornan patógenos cuando el medio ambiente
uterino se ve alterado por procesos inflamatorios propios de los eventos de la
reproducción y no se genera una adecuada respuesta de los mecanismos de
defensa uterinos.
La presencia de más de un neutrofilo por cada diez
células epiteliales en los frotis endometriales de las yeguas problema con
tinción por medio de la técnica de papanicolaou revelan la actividad de un
proceso inflamatorio en el endometrio tal como lo demuestran los estudios de
Di Fiore, Hernández y Mc Kinnon
La eliminación de la inflamación, previo
tratamiento con antibiótico intrauterino, como lo sugieren Cole, Ginther y
Nelly aumenta las tazas de fertilidad en las yeguas problema, obteniéndose con
esto una solución satisfactoria en los procesos de metritis y endometritis
equina.
Conclusiones:
Se encontró que los lavados uterinos de menor
eficacia son los realizados con solución salina fisiológica, los de eficacia
media son los lavados con gentamicina y los que ofrecen mayor margen de
utilidad para resolver problemas de infertilidad infecciosa son los lavados
realizados con sulfanilamida.
De las yeguas testigo se obtuvieron tazas de
gestación del 100%, considerando que debido al bajo índice de fertilidad en
equinos dos yeguas recibieron servicio en dos ciclos y una en tres.
Las yeguas tratadas (yeguas problema) presentaron
tazas de gestación del 71.4%, confirmando con esto que los lavados uterinos en
equinos son útiles para resolver casos de infertilidad infecciosa.
BIBLIOGRAFIA
1. Allen WE. Control endocrino del
ciclo estral y pubertad. Fertilidad y obstetricia equina. Zaragoza (España).
Acribia S.A. 1994.9-12
2. Blood DC, Studdert VP.
Diccionario de veterinaria. Madríd: Interamericana Mc.Graw Hill. 1996
3. Bribiesca GJ. influencia del
numero de servicios en la flora bacteriana del cervix en yeguas (tesis de
licenciatura). México (DF) México: Universidad Nacional Autónoma de México,
1980.
4. Cole HH, Cupps PT.
Reproducction in domestic animals. Academia Press.
13 ed. New York (EU). 1991.
5. Di Fiore, Mariano SH. Cuerpo del
útero. Atlas de histología normal. Buenos Aires (Argentina).
Liberia "El Ateneo". 1998.176-181
6. Elliot RE. The
microflora of the cervix of the thoroughbred-mare. Clinical and
bacteriological survey in a large animal practice. 19 ed. EU 1980,291
7. Ginther OJ.
Reproductive biology of the mare (1979) Equiservices, 4343 Garfoot road cross
planís. Wisconsin 1997.
8. Hernández PE, Fernández RF,
Cortés SS. La técnica de papanicolaou. Fundamentos teórico prácticos de la
citología exfoliativa en medicina veterinaria. Universidad Autónoma
Metropolitana. 1 ed. México DF. 1999.12-13
9. Mc Kinnon AO, Voss JL, Squires
EL, Carnevale EM. Diagnostic ultrasonigraphi, Equine
reproduction. Lea and Febiger. Philadelphia (London) 1993.266-302
10. Mc Kinnon AO,
Voss JL. Infectious cases of infertility. Equine Reproduction. Lea and Febiger.
Malvern, Pennsylvania. 1993.381-391
11. Nelly DP, Liu
IK, Hillman RB. Reproducción equina. Uruguay: Emisferio sur 1991
12. Roberts JS. Genital infections causing infertility in
mares. Veterinary obstetrics and genital diseases. Ithaca NY. 1980.530-535
13. Robinson NE.
Reproduction. Current therapy in equine medicine. Philadelphia: W.B. Saunders
Company 2:1987.491-573
14. Rose RJ,
Hodgson DR. Infertilidad en la yegua. Manual clínico de equinos. México
DF: Interamericana Mc. Graw Hill. 1996.41-42
15. Rossdale PD. El caballo de la
concepción a la madurez. Introducción. Zaragoza (España): Acribia S. A. 1998.Vll-Xl
16. Scout P,
Daley, Baird, Stugess, Frost. The aerobic bacterial flora of the reproductive
tract of the mare. Vet Rec. Queensland 1980.
17. Sumano LH, Ocampo CL.
Farmacología veterinaria. McGraw Hill Interamericana 2 ed. México 1997.
18. Taylor FG, Hillyer MH.
Diagnostico de las enfermedades genitales de la yegua. Técnicas diagnosticas
de medicina equina. Zaragoza (España): Acribia S. A. 1999.131-135
19. Zarco L, Boeta M. Reproducción
equina. Academia de investigación en biología de la reproducción A.C. México
DF. 1995
Fuente: Engomix -
www.engormix.com
