Estimación e interpretación del HPG (número de huevos por gramo de materia fecal)
Anamnesis y consideraciones generales
En general no hay una relación directa entre el HPG y el Nº de parásitos existentes en el tracto gastrointestinal.
Edad
En el bovino después de los 9 –11meses de edad es muy relativo el dato de HPG, sobre todo si es bajo porque indica que la inmunidad puede estar actuando en forma importante, pero si
el HPG es alto se interpreta el conteo y su importancia como tal.
Estado general
Es conveniente recorrer los potreros para observar el o los lotes de animales problemas, de esta manera se tiene una mejor visión del conjunto y se puede considerar comparativamente
al lote en su conjunto.
Es de interés especial considerar:
- Antecedentes de la alimentación, cómo fue durante el año y sobre todo los 2 a 3 meses antes hasta la fecha, en cuanto a calidad y cantidad del alimento.
- Antecedentes de enfermedades tanto infecciosas, carenciales o parasitarias.
Manejo del rodeo
Epoca de parición, de destete, fecha de vacunación y de desparasitación. Es muy importante conocer la marca del producto aplicado la última vez (según el tipo de droga cambia la
persistencia del efecto), a qué tipo de potrero se los envió luego del tratamiento (por ej. los potreros bajos son más peligrosos que los altos).
Condiciones climáticas que pudieran haber producido alteración en la supervivencia de las larvas en la pastura. Recordar que la humedad favorece la supervivencia de las mismas
y son factores adversos el sol intenso y la sequedad.
Tipo de pasturas
Aquellas en las que abundan el trébol y otras leguminosas mantienen mejor la humedad del suelo y favorecen por lo tanto la sobrevivencia y evolución de las larvas. Si su número es muy
alto será un peligro constante para la reinfección de los animales. El historial de problemas previos por potrero es un dato valioso.
A estos aspectos debemos considerarlos en su conjunto ya que todos se interrelacionan y ayudan a realizar un diagnóstico y pronóstico.
Extracción de muestras
Número de animales: debe ser representativo del lote afectado, tener en cuenta que todos esos animales estén en un mismo
potrero, porque si pertenecen a potreros distintos se debe tomar de los dos lotes muestras independientes. En general se considera adecuado un número de 12 a 15 muestras por lote. La capacidad de análisis del laboratorio es una limitante que debe tenerse en
cuenta al organizar un muestreo en un establecimiento.
Las muestras deben ser individuales, no realizar un pool mezclando materia fecal de varios animales. Los análisis
individuales permiten apreciar si hay animales con HPG alto con respecto a otros (se puede deber al principio de una infección) y más si existen condiciones concomitantes, anteriormente citadas. El pool haría que esos datos se diluyeran en el resto.
Tener cuidado con elegir sólo animales con diarrea, este signo importante es un indicador del final de la enfermedad; los
animales diarreicos quizás no representen -por su bajo conteo de HPG- la realidad. Si se mandan apartar animales a caballo, tener en cuenta que los enfermos, correrán menos llegando sólo los mejores.
Se deben sacar las muestras directamente del recto estimulando el reflejo anal introduciendo los dedos. Esto permite tomar
información adicional, como consistencia, color, presencia de mucosidad, etc. Es práctico llenar la manga con animales e ir sacando las muestras sin soltarlos porque así se inmovilizan entre ellos.
La cantidad de materia fecal debe ser entre 80-100 gramos por animal. La cantidad de huevos no está distribuida
homogéneamente en la materia fecal, de esta manera luego de obtenida la muestra en el laboratorio se homogeiniza y se toma la cantidad necesaria para el método. Este punto es sumamente importante y ocasiona grandes errores si no se toma esos recaudos.
Información complementaria útil
La necropsia a campo y el procesamiento en el laboratorio de las muestras de animales parasitados brindará información precisa no sólo del tipo y número de parásitos presentes sino
también del estado de desarrollo de la población parasitaria.
Cuando se tiene oportunidad de sacrificar un animal o realizar la necropsia de uno recién muerto, es conveniente medir el pH del contenido abomasal con la finalidad de estimar la
funcionalidad de dicho órgano (pH normal = 1,5 - 2; animales muy parasitados pH 4-6).
La necropsia puede revelar alteraciones morfológicas asociadas a la parasitosis como por ejemplo: edemas en tejido subcutáneo, ascitis, linfonódulos mesentéricos hipertrofiados y
edematosos, gastritis con edema de pliegues, enteritis catarral, etc.
Necropsia y toma de muestras para recuento de parásitos adultos
Una vez abierta la cavidad abdominal se procede a ligar el cuajo a la altura del píloro, y se lo separa del resto del aparato digestivo junto al librillo para evitar derrames de
contenido. El otro corte se hace inmediatamente detrás de la ligadura en el píloro.
El intestino delgado es separado del mesenterio con cuchillo filoso hasta llegar a la válvula ileocecal.
El intestino grueso se separa de la misma manera, descartándose la última parte del recto.
Equipamiento necesario
2 Baldes de 12-15 lts. (A) y 5-7 lts. (B)
2 Cucharones de 100 cc. (C) y 25 cc. (D)
1 Recipiente de vidrio de 750 cc. de capacidad, boca ancha y tapa metálica roscada
1 Abridor de intestino (tijera punta roma)
Bandejas
Placas de Petri
Solución yodo-iodurada; hiposulfito de sodio.
Preparación del equipo
El balde B es marcado en su lateral con divisiones en múltiplos de 10 (10, 20, 30, ...) equivalentes al volúmen del cucharón C.
El recipiente de vidrio de 750 cc. es marcado en su lateral con divisiones en múltiplos de 5 (5, 10, 15, ...) equivalentes al volúmen del cucharón D. A la tapa metálica se le corta en
círculo la parte superior para colocarle una malla de 60 meshes la cual quedará fija a través de una arandela plana de goma, cuando la tapa se enrosque en el frasco.
Procedimiento de laboratorio
Una vez obtenido el cuajo y el intestino delgado, se separa una de otra evitando se pierda el contenido. Al cuajo se lo abre por una de sus curvaturas y el contenido es volcado en el
balde A. Se lava cuidadosamente por pliegue agregando el lavado al contenido ya guardado.
El contenido del balde A es pasado al balde B y se agrega agua hasta nivelar en una de las marcas laterales.
Homogeneizar el contenido con el cucharón C y extraer varias alícuotas hasta completar el 10 % del total del lavado.
La submuestra del 10% se pasa al recipiente de vidrio marcado el cual se cierra y se agita vigorosamente para disminuir el contenido. Se agrega agua y se repite la operación hasta que
el contenido quede límpido.
Agregar agua hasta nivelar el contenido en una de las marcas laterales. Se homegeiniza con el cucharón D y se extrae una alícuota equivalente al 10% como en el punto 3.
La alícuota se pone en una placa de Petri con el agregado de unas gotas de tintura de yodo. Se deja reposar 3 minutos y se decolora con hiposulfito de sodio. En un fondo claro se
observarán los nematodes teñidos marrón oscuro. Para facilitar la tarea se efectuará la lectura sobre una superficie iluminada.
Se extraerán los parásitos con aguja histológica o símil y se los pasa a una placa de Petri con agua para su recuento e identificación.
Factor de multiplicación: Según las diluciones seguidas en el ejemplo cada parásito obtenido debe ser multiplicado por 100. Esto surge porque las dos alícuotas con las que se trabajó
fueron del 10% cada una. Por lo tanto multiplicado los dos porcentajes arrojan el factor de multiplicación.
Guía de recuento de adultos en bovinos (varía con la edad). (Skerman y Hillard, 1966)
|
Géneros |
Grado de infección |
|
Bajo |
Moderado |
Alto |
|
Haemonchus |
1-400 |
400-1000 |
>1000 |
|
Ostertagia |
1-5000 |
5000-10000 |
>10000 |
|
Trichostrongylus axei |
1-10000 |
10000-30000 |
>30000 |
|
Cooperia |
1-5000 |
5000-10000 |
>12000 |
|
Bunostomun |
1-50 |
50-200 |
>200 |
|
Oesophagostomun Radiatum |
1-100 |
100-1000 |
>1000 |
Guía de recuento de adultos en ovinos
|
Géneros |
Grado de infección |
|
Bajo |
Moderado |
Alto |
|
Haemonchus |
1-500 |
500-1500 |
>1500 |
|
Ostertagia |
1-1000 |
1000-10000 |
>10000 |
|
Trichostrongylus |
1-1000 |
1000-10000 |
>10000 |
|
Bunostomun |
20 |
50 |
>100 |
|
Nematodirus |
1-3000 |
3000-10000 |
>10000 |
|
Cooperia |
1-10000 |
10000-20000 |
>20000 |
|
Oesophagostomun |
1-50 |
50-100 |
>100 |
|
Chabertia |
1-20 |
20-100 |
>100 |
